TRACE AND TERMINATE SALMON GILL POXVIRUS: TRACEPOX

Prosjektet ble pga likviditeten i NFR i 2022 skjøvet vesentlig fram i tid. Før utsettelsen av aktiviteter ble det sendt ut en Quest-back-spørreundersøkelse til drivere av settefiskanlegg og det kom inn 39 responser. Den 26. april 2022 holdt prosjektpartnerne en åpen faglig workshop om laksepox. På workshopen ble bl.a resultatene fra quest-back'en presentert og diskutert. Det ga verdifull informasjonsdeling og oppdatering av kunnskapsstatus mht viruset og problemene det skaper slik at bransjen fikk anledning til å oppdatere sine prosedyrer. En oppsummering av workshop'en ble publisert populærvitenskapelig i Norsk Fiskeoppdrett (nr 5, 2022) av Brit Tørud og Mona Gjessing. Arbeidet med å teste ut effekt av desinfeksjon vha klor er påbegynt i samarbeid med prosjektpartner Xylem, og vil bli utvidet da fra 1ste juni 2024 er en PostDoc forsker, Sun Baojian, ansatt på prosjektet. Videre er det påbegynt et arbeid med å undersøke om en kan bruke celle-kultur for flere av prosjektets formål. For metodeutvikling mht mer sensitiv metodikk og smittesporing så er innhenting av relevant materiale fra næringspartnere under organisering. De øvrige deler av prosjektet vil bli igangsatt senere.

Recent studies show that salmon gill poxvirus disease has a wide distribution, is a significant welfare problem and has a huge negative economical impact. The ongoing NRC fincanced project SALPOX has resulted in a successful experimental model recreating salmon gill poxvirus disease opening for studies that were previously impossible. Further, genotyping assay (MLVA), has been developed for studying the epizootiology of SGPV. This method has shown that within certain Norwegian fjord systems and individual freshwater salmon smolt farms in Norway, discrete MLVA clustering patterns that prevailed over time were observed. Many hatcheries experience recurrent outbreaks with SGPV disease, but despite screening of wild fish in the water sources and screening of hatcheries, we still do not know the reservoir of the virus or if salmon infected with SGPV become carriers of the SGPV. Apparently, as assessed from the results from pcr of gills form salmon that have survived an outbreak, they get rid of the virus. However, experiences from the field cannot rule out that such surviving salmon are in fact not shedding SGPV. TRACEPOX will benefit from support from MOWI ASA, SISOMAR AS, NOFIMA, Heilsufrøðiliga starvsstovan, Xylem, University of South- Eastern Norway as external partners and from already established platforms, SEC-TEQ where part of the aims is to provide tools for sequencing, more effective diagnostics and tracing and BioDirect focusing on establishment of biomarkers related to disease. TRACEPOX aims to find even more optimal ways to monitor and trace SGPV and to inactivate the virus, and thereby reduce losses and suffering caused by SGPV and secondary gill problems in the wake of SGPV. Further, to sharing experience on how to prevent a SGPVD outbreak and reduce suffering and death caused by SGPV.